Карточка патентного документа
(11) TJ 1668 (13) PP Действует

ЭМУЛЬГИРОВАННАЯ ВАКЦИНА ПРОТИВ САЛЬМОНЕЛЛЕЗНОГО АБОРТА ОВЕЦ

(51) МПК A61K39/112 (45) Опубликован 30.01.2026
Сведения о документе ▾
(11) TJ Номер документа
1668
(13) Код типа документа
PP
(51) МПК
A61K39/112
(45) Дата публикации
30.01.2026
Статус
Действует
Заявка ▾
(21) Рег. номер заявки
2401984
(22) Дата подачи заявки
19.07.2024
Лица ▾
(71) Заявитель(и)
Институт ветеринарной медицины Академии сельскохозяйственных наук Таджикистана (TJ)
(72) Автор(ы)
Амирбеков М. (TJ); Атовуллозода Р.А. (TJ); Назруллозода С.Х. (TJ); Рахимов Н.И. (TJ); Раджабов Х.И. (TJ); Расулов С.А. (TJ); Набиева М.С. (TJ); Разоков Ш.И. (TJ)
(73) Патентообладатель(и)
Институт ветеринарной медицины Академии сельскохозяйственных наук Таджикистана (TJ)

(57)Реферат

Изобретение относится к области ветеринарной микробиологии и биотехнологии вакцинных препаратов, предназначенных для профилактики сальмонеллезного аборта у овец.

Целью изобретения является повышение иммуногенных свойств вакцины и эффективности методов профилактики сальмонеллезного аборта овец с использованием местных штаммов Salmonella abortus ovis koshon/2020.

Поставленная цель достигается за счет использования бактериальной массы штамма Salmonella abortus ovis koshon/2020 при следующем соотношении компонентов, масс. %:

Бактериальная масса штамма Salmonella abortusovis koshon/2020    50-60

Сурковый жир с ланолиновым маслом (87:13) 17-18

Формалин                                                      0,2-0,3

Физиологический раствор                       22,7-31,8

Формула изобретения

Эмульгированная вакцина против сальмонеллезного аборта овец, содержащая бактериальную массу штамма Salmonella abortusovis, ланолиновое масло, формалин и  физиологический раствор, отличающаяся тем, что, она дополнительно содержит сурковый жир при следующем   соотношении компонентов,  масс. %:

Бактериальная масса штамма Salmonella abortusovis koshon/2020    50-60

Сурковый жир с ланолиновым маслом (87:13) 17-18

Формалин                                                     0,2-0,3

Физиологический раствор                      22,7-31,8

Описание

Изобретение относится к области ветеринарной микробиологии, а именно биотехнологии вакцинных препаратов, и может быть использовано для профилактики сальмонеллезного аборта у овец.

Среди инфекционных болезней, снижающих эффективность овцеводства в Таджикистане, значительное место занимает сальмонеллезный аборт овец (Salmonella abortus ovis), который причиняет значительный экономический ущерб животноводству [1,2,4,6].

На текущий момент известно более 2500 серотипов сальмонелл. По данным Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ), количество возбудителей этой инфекции увеличивается из года в год [1,3].

Многолетний опыт использования убитых вакцин с применением гидроокиси алюминия в качестве адъюванта показал их недостаточную эффективность. Согласно данным В.Ф. Свириденко и соавт. [3], концентрированная формалиновая вакцина против сальмонеллезного аборта овец, применяемая в многих овцеводческих хозяйствах, оказалась неэффективной. Аборты сальмонеллезной этиологии регистрировались одинаково часто как среди привитых, так и среди не привитых стад.

Известна инактивированная вакцина против сальмонеллеза овец [8], изготовленная из штаммов Salmonella abortus ovis № 876; Salmonella dublin № 1449; Salmonella typhymurium №159, а также в качестве иммуностимулятора штамма Rodococcus equi № 2.

Известна также аттенуированная (ослабленная) живая вакцина, разработанная в Казахстане, которая представляет собой ослабленную культуральную вакцину [2,6].

Недостатками этой вакцины являются высокая остаточная реактогенность и возврат клеток вакцинных штаммов к исходному вирулентному состоянию. Кроме того, отсутствуют генетические маркеры (марки), которые позволяли бы отличать их от естественных прототипов.

Для специфической профилактики сальмонеллезного аборта овец также используется поливалентная формалиново-тиомерсаловая вакцина [7].

Вакцина содержит антигены трех сероваров: Salmonella abortus ovis; Salmonella dublin; Salmonella typhymurium, производимая Армавирской биофабрикой. Вакцину вводят дважды перед случкой и однократно ревакцинируют за 1 месяц до окота. Из-за высокой реактогенности овец не вакцинируют в последний месяц беременности и первую неделю после окота, а ягнят в возрасте до 20 дней. Эта вакцина из-за низкой иммуногенности не широко используется в практике.

Предложенная вакцина включает антигены трех сероваров сальмонелл: Salmonella abortus ovis, Salmonella typhimurium, и S. dublin. В дополнение содержится физиологический раствор, формалин и адъювант — маслинная взвесь клеток родококка в качестве иммуностимулятора. Однако, согласно данным многих исследователей, основным возбудителем сальмонеллеза овец является Salmonella abortus ovis, в редких случаях обнаруживается Salmonella typhimurium. Автор исследовал минеральное масло с безводным ланолином в соотношении 83:17 в качестве адъюванта [7].

Целью изобретения является повышение иммуногенных свойств вакцины и эффективности методов профилактики сальмонеллезного аборта овец с использованием местных штаммов Salmonella abortus ovis koshon/2020.

Поставленная цель достигается за счет использования бактериальной массы штамма Salmonella abortus ovis koshon/2020 при следующем соотношении компонентов, масс. %:

Бактериальная масса штамма Salmonella abortusovis koshon/2020    50-60

Сурковый жир с ланолиновым маслом (87:13) 17-18

Формалин                                                     0,2-0,3

Физиологический раствор                      22,7-31,8

 

Схема приготовления вакцины осуществляют следующим образом.

o          Используют питательную среду для культивирования сальмонелл (бульон Хоттингера или среда Кауфмана или МПБ).

o          Проводят посев штамма Salmonella abortus ovis koshon/2020.

Пример 1. Питательные среды (бульон Хоттингера или среда Кауфмана или МПБ) для культивирования штамма Salmonella abortus ovis koshon/2020.

Культивацию сальмонелл проводят на бульоне Хоттингера, среде Кауфмана или МПБ с добавлением сыворотки крови лошадей до конечной концентрации 5% и глюкозы до конечной концентрации 2%.

Определение бактериальной массы на 1 кубический сантиметр может достигать 1,0-2,0 миллиарда микробных клеток.

Процесс приготовления адъюванта начинают с взятия жира сурка и безводного ланолина в соотношении 87:17. Ланолин расплавляют в необходимом количестве и добавляют к жиру сурка. Затем смесь перемешивают и стерилизуют при температуре 115°C в течение 1 часа.

Адъювант проверяют на стерильность путем высева в 2 пробирках на каждую из следующих сред: МПА, МПБ, Китта-Тароцци и Сабуро. Посевы выдерживают при температуре 37°C в течение 10 суток (среда Сабуро при температуре 22-24°C). Не должно быть роста культур микроорганизмов на всех средах.

Пример 2. Подготовка посевного материала

Перед получением бактериальной массы необходимо пересеять культуру 3-4 раза с интервалом 1 суток на среде Кауфмана, Хоттингера или в МПБ. Культивацию осуществляют при температуре 37°C в течение 24-48 часов.

 Получение бактериальной массы штамм Salmonella abortus ovis koshon/2020 проводилось

в стеклянных баллонах (20 л) или в реакторах (100 л), инактивированных формалином до конечной концентрации 0,2% или 0,3% в течение 3 суток при температуре 37°C. В процессе использовали технический формалин согласно ГОСТу 1625-75, содержащий 37% формальдегида.

После завершения инактивации бактериальной массы проверяли на стерильность путем высева в 2 пробирки на каждую из следующих сред: МПА, МПБ, Китт-Тароцци и Сабуро. Посевы на стерильность выдерживают при температуре 37°C в течение 10 дней (среда Сабуро при температуре 22-24°C в течение 20 дней).

Инактивированную культуру Salmonella abortus ovis koshon/2020 после инактивации сохраняют при температуре от +4°C до +10°C и используют для изготовления вакцины.

 Инактивированные бактериальные суспензии концентрируют с помощью центрифугирования при скорости 5000-6000 оборотов в течение 15 минут до достижения конечной концентрации 60 миллиардов микробных клеток в 1 кубическом сантиметре.

 Масло (жир сурка) и ланолиновую смесь (в соотношении 87:17) соединяют с бактериальной суспензией сальмонелл в соотношении 1:1 в бутылях. Затем смесь перемешивают в эмульгаторе со скоростью 6000 оборотов в минуту в течение 10-15 минут.

 Эмульгированную вакцину разливают в бутыли для упаковки в стеклянные флаконы по ТУ 10-09-202-86 объемом 100 кубических сантиметров, которые тщательно закрывают резиновыми пробками по ТУ 38006-108-78 и запечатывают алюминиевыми колпачками по ОСТ 64-909-86.

Одна иммунизирующая доза эмульгированной вакцины для молодняка составляет 1 мл, а для овцематок — 2 мл подкожно.

Пример 3. Определение безвредности

Вакцину вводят подкожно морским свинкам с массой тела 250-300 г в объеме 0,5 мл в области спины. В течение 10 суток после введения, вакцина не должна вызывать заболеваний или приводить к гибели животных.

По данной схеме было изготовлено 4 экспериментальных серии вакцин против сальмонеллезного аборта овец. Контроль вакцин на стерильность, безопасность и активность проводился с использованием общепринятых методов. Вакцина была апробирована в экспериментальных и производственных условиях на 1540 головах мелкого рогатого скота в трех сериях опытов.

Опыты проводились на базе подсобного хозяйства «Душанбе» Министерства обороны Республики Таджикистан. В первом опыте было использовано 231 серонегативных овцематок, не имеющих антител к возбудителю сальмонеллезного аборта овец. Животные были разделены на 3 группы.

Овцематок первой группы (121 голову) вакцинировали гидроокисалюминиевой вакциной экспериментальной серии № 1, изготовленной 30.06.22 года, подкожно в дозе 2 мл.

Овцематок второй группы (100 голов) иммунизировали подкожно однократно вакциной «ОКЗ» производства ООО «Агровет» Российской Федерации, инактивированной и в дозе 1,0 мл (прототип).

Овцематок третьей группы (10 голов) вакцинировали внутримышечно экспериментальной серией вакцины № 1, эмульгированной, изготовленной 30.06.2022 года, в дозе 2 мл.

У овцематок первой группы наблюдалось незначительное повышение температуры тела до 40,5-40,8 °C на 3-5-й сутки (см. таблица 1).

  После введения вакцины "ОКЗ" от ООО "Агровет" РФ (контрольная группа), у овцематок второй группы наблюдалось незначительное повышение температуры тела до 40,2-40,8°C на 2-4-й сутки (см. таблица 2). При введении экспериментальной эмульгированной серии вакцины (третья группа), у овцематок также отмечалось незначительное повышение температуры тела до 40,2-40,9°C на 4-6-й сутки (см. таблица 3).

При серологическом исследовании сыворотки крови овцематок первой группы в реакции агглютинации (РА) были обнаружены антитела к возбудителю сальмонеллезного аборта овец в титрах от 1:25 до 1:800 у 25,6% животных.

У овцематок второй группы были обнаружены антитела в реакции агглютинации (РА) в титрах от 1:50 до 1:500 у 23% животных.

Среди овцематок третьей группы до вакцинации не было обнаружено антител к возбудителю сальмонеллезной инфекции. Все овцематки из этой группы были серонегативными до вакцинации.

У овцематок первой группы, где использовалась гидроокисьалюминиевая вакцина (ГОА) в качестве контрольной, антигемагглютинирующие антитела к возбудителю сальмонеллезной инфекции овец были обнаружены на 14 и 30 сутки в следующих титрах соответственно: 1:460 и 1:1480 (см. таблица 4).

При серологическом исследовании сыворотки крови овцематок второй контрольной группы были обнаружены антигемагглютинины к возбудителю сальмонеллезного аборта овец на 14 и 30 сутки в следующих титрах соответственно: 1:330 и 1:1080 (см. таблица 5).

Как видно из данных таблицы 5, у 50% вакцинированных овцематок второй группы вакциной производства ООО «Агроветсервис» Российской Федерации были обнаружены антитела только в титрах 1:100 и выше.

Результаты экспериментальных исследований по специфической профилактике сальмонеллезного аборта овец с использованием инактивированной эмульсин вакцины показали её безвредность и высокую иммуногенность для овцематок случного возраста. Антитела в сыворотках крови животных третьей группы в реакции агглютинации (РА) на 14 и 30-е сутки достигали титров 1:740 и 1:2240 соответственно, что значительно выше, чем в двух контрольных группах.

Определение эффективности опытной серии эмульсинвакцины проводилось на беременных овцематок в период с января по апрель 2023 года.

В результате исследования установлено, что среди овцематок, вакцинированных первой группой (контроль №1), случаи абортов, мертворождений и гибели произошли лишь в 14% случаев, что свидетельствует о высокой эффективности инактивированной гидроокисьалюминиевой вакцины (прототип) — эффективность составила 86%.

Эффективность вакцины «ОКЗ», произведённой ООО «Агровет» Российской Федерации, в данном опыте составила 84%.

Таким образом, предложенная эмульгированная вакцина, изготовленная Институте ветеринарной медицины, обладает следующими преимуществами:

·  она слабореактогенна, что минимизирует негативные реакции после вакцинации;

·  обеспечивает высокий уровень иммунитета против сальмонеллезного аборта овец;

·  снижает количество случаев абортов у беременных овцематок;

·  предотвращает передачу сальмонеллезной инфекции на молодняк овец, обеспечивая их защиту.

Эти преимущества делают данную вакцину эффективным инструментом в борьбе с сальмонеллезным абортом и защите стада овец.

Создание данной вакцины, способствует защите овец от сальмонеллезного аборта путём использования оптимальных пропорций компонентов, включая бактериальную массу, жир и ланолин для эмульсии, формалин для инактивации и физиологический раствор для создания желаемой консистенции и стабильности вакцины.

(56) Документы, цитированные в отчёте

1.                   М. Амирбеков и др, «Эпизоотологическая ситуация по салмонеллезной инфекции овец в Таджикистана».- Известия национальной академии наук Таджикистана.- Душанбе, 2022, №3(218), стр. 122-130.

2.                   К.Б.Бияшев, «Иммунопрофилактика сальмонеллеза сельскохозяйственных животных в Казахстане».-автор.дисс.док вет наук, Алма-Ата, 1992, 50стр.

3.                   В.Ф. Свириденко, А.А. Волкова, М.И. Исаков и др. «Изучение фуразолидона для профилактики и лечения сальмонеллеза овец и ягнят». – Инфекционные болезни овец, Фрунзе, 1976, стр.29-35.

4.                   А.К. Сугурбен, А.Ж. Мокбуз, К.Б. Орынтиев и др. «Этиология аборта овец в ряде хозяйств в Казахстана», Научный электронный журнал и меридиан, Выпуск №10(44),2020, стр.1-6.

5.                   М.Н.Егорова, А.К. Мусаева, Б.К. Канатов.- «Штамм бактерии В-0066 Salmonella abortus ovis АН,9/2, используеммый для получения инактивированной вакцины против салмонелленного аборта овец».- Диагностика и профилактика сальмонеллезного аборта овец//. Вестник сельскохозяйственной науки .- Бишкек, 2012, №6, стр.138-243.

6.                   Б.А. Матвиенко, К.Б. Бияшев. «Иммунопрофилактика паратифа телят живой вакцины из аттенуированного штамм S.dublin», Труды АЗВИ/ инфекционные и паразитарные болезни с-х животных. Т.ХХУП.-1974, стр.27-30.

7.                   Р.А. Кадышев, А.А. Кунаков, В.А. Седов. «Инфекционные болезни овец». Москва, 1987, стр.148-156.

8.                   Патент №94036809/13,30.09.1994, авторы: И.П. Иренков, М.А. Лучко. «Инактивированная вакцина против сальмонеллеза овец».

📎 Прикреплённые файлы